Ветеринарные статьи - переводы из научных журналов / Инфекционные заболевания собак и кошек / Герпесвирусная инфекция кошек.2012г. Рекомендации по лечению и профилактике Европейского Консультативного Совета по болезням кошек.

Герпесвирусная инфекция кошек.2012г. Рекомендации по лечению и профилактике Европейского Консультативного Совета по болезням кошек.

Journal of Feline Medicine and Surgery

June 2013

Перевод с англ.: ветеринар - невролог/кардиолог Васильев

Что нового ?

Это обновленное издание руководства по герпесвирусной инфекции кошек (FHV). Основные изменения в сравнении с предыдущим изданием следующие:

Герпесвирусная инфекция кошек является наиболее важной причиной язв роговицы (Hartley, 2010).
При выполнении молекулярной диагностики следует избегать использования флуоресцина и местных анестетиков, поскольку они могут влиять на чувствительность некоторых ПЦР методик (Gould,2011), если это допускается диагностическими лабораториями.
Табл 2.2 Симптоматическое лечение при остром респираторном заболевании
Табл 2.4 Противовирусные препараты, рекомендованные для местного и системного лечения острого заболевания глаз, вызванного FHV.
Вакцинация обеспечивает хорошую защиту от появления клинических симптомов, а также против выделения вируса, в пределах одной недели после ее проведения(Jasetal., 2009).
Материнский иммунитет может препятствовать ответу на вакцинацию до 8 недель возраста, в среднем (Poulet, 2007).

Домашние питомники

Герпесвирусная инфекция кошек часто наблюдается в домашних питомниках.
Новые кошки должны карантинироваться в течение первых 3 недель и кошки должны находиться изолированно, если известно, что они из того же самого питомника.

Вирус

Герпесвирус кошек (FHV), возбудитель вирусного ринотрахеита кошек, распостранен во всем мире. Вирус принадлежит порядку Herpesvirales, семейству Herpesviridae, подсемейству Alphaherpesvirinae, роду Varicellovirus. Хотя описан только один серотип, вирулентность может варьировать между различными штаммами; различия также могут наблюдаться при рестриктазном анализе.

Геном с двухцепочной ДНК вируса FHV находится внутри икосаэдрического капсида, окруженного белковой оболочкой и фосфолипидами, которые содержат не менее 10 гликопротенов. В организме кошки, FHV реплицируется в эпителиальных клетках как в коньюнктиве, так и в верхних респираторных путях и в нейронах. Инфицирование нейронов позволяет вирусу длительно сохранять жизнеспособность после первичной инфекции. FHV относи тся антигенно к герпесвирусу собак и истинным герпесвирусам 1 и 2; не известно о перекрестной передаче между видами.

Вирус инактивируется в течение 3 часов при температуре 37 °C и чувствителен к большинству коммерческих дезинфектантов, антисептиков и моющих средств. При температуре 4°C он остается жизнеспособным в течение примерно 5 месяцев, при температуре 25°C в течение месяца, и инактивируется при температуре 56°C в течение 4-5 минут.

Эпидемиология

Домашняя кошка является основным хозяином FHV, но он выделяется также и у других кошачьих, включая гепардов и львов, а антитела к нему выявлены у пум. Не имеется доказательств инфицирования людей.

Латентная хроническая инфекция является типичным исходом острой инфекции и периодическая реактивация вызывает выделение вируса с выделениями из носовой, ротовой полостей и секретами коньюнктивы. За исключением питомников, заражение из окружающей среды не является важным для трансмиссии вируса. Выделение вируса остро инфицированными кошками, также как латентно инфицированными кошками, демонстрируя реактивацию, являются двумя основными источниками инфекции.

Трасплацентарная инфекция не наблюдается в полевых условиях. Латентно инфицированные самки после родов могут передавать FHV своему потомству, поскольку роды и лактация являются стрессом, приводя к вирусной реактивации и выделению вируса. Котята могут также приобретать FHV инфекцию в раннем возрасте, до вакцинации. Исход инфекции зависит от материнских антител: при наличии высокого титра антител котята защищены от заболевания, демонстрируя субклиническую инфекцию, которая приводит к задержке размножения вируса, в то время при отсутствии достаточного количества материнских антител могут развиваться клинические проявления.

В небольших популяциях здоровых животных наличие выделения вируса может быть меньше чем в 1% случаев, в то время как в больших популяциях, особенно с наличием клинической сипмптоматики, до 20% кошек могут выделять вирус. В приютах риск выше: если в приют поступает 4% кошек, выделяющих вирус, через неделю 50% кошек могут выделять вирус. Низкая начальная распостраненность, вероятно, отражает перемежающуюся природу выделения вируса в латентном периоде.

Патогенез

Вирус попадает в организм через носовую, ротовую полости или коньюнктиву. Он вызывает литическую инфекцию эпителия носовой полости с распостранением в коньюнктивальный мешок, глотку, трахею, бронхи и бронхиолы. Поражения характеризуются мультифокальным некрозом эпителия с инфильтрацией нейтрофильными гранулоцитами и воспалением. Преходящая виремия, ассоциированная с мононуклеарными клетками крови, наблюдается после естественной инфекции у молодых кошек. Это наблюдается также у новорожденных.

Выделение вируса начинается через 24 часа после инфицирования и длится в течение 1-3 недель. Острое заболевание разрешается в пределах 10 -14 дней. У некоторых животных могут развиваться хронические поражения в верхних дыхательных путях и глазах.

После инфицирования вирус распостраняется по сенсорных нервам и достигает нейронов, особенно в тригеминальном ганглии, который является основным место латентного существования вируса. Почти все кошки, демонстрирующие первичную инфекцию, становятся переносчиками, длительно выделяющими инфекцию. Не имеется прямых диагностических методов для идентификации латентной инфекции, поскольку вирус персистирует как геномная ДНК в ядрах латентно инфицированных нейронов, без репликации. Выделение вируса может быть вызвано экспериментально приблизительно у 70% латентно инфицированных кошек применением глюкокортикоидного лечения. Другие реактивирующие стрессовые факторы включают лактацию (40%) и попадание кошки в новую окружающую среду (18%).

Некоторые взрослые кошки демонстрируют острые поражения во время вирусной реактивации; заболевание после реактивации называется рецидивом.

Коньюнктивит может быть ассоциирован с язвами роговицы, которые могут развиваться в хронический секвестр. Стромальный кератит является вторичной, иммунообусловленной реакцией вследствие наличия вируса в эпителии или строме. Повреждение носовых раковин в течение острого заболевания, вероятно, является предрасполагающим фактором развития хронических ринитов.

Иммунитет

Пассивный иммунитет, приобретенный при помощи колостральных антител

В течение первых недель жизни котята защищены от инфекционных заболеваний материнскими антителами, но при герпесвируснюй инфекции кошек уровни антител обычно низкие. Они могут персистировать в течение 10 недель, но могут исчезать уже к 6 неделям возраста (у примерно 25% котят)

Активный иммунный ответ

Гликопротеины, встроенные в мембрану герпесвируса важны для индукции иммунитета; после инфекции, выявление вируснейтрализующих антител (VNA) коррелирует с выявлением гликопротеинов FHV. Кроме того, иммунизация кроликов протеинами мембраны FHV привела к появлению высокого титра VNA.

Естественная герпесвирусная инфекция кошек не вызывает полного иммунитета; в общем, иммунный ответ защищает от заболевания, но не от инфекции; после повторной инфекции слабовыраженные клинические симптомы наблюдались только в течение 150 дней после первичной инфекции.

VNA титры после естественной инфекции часто низкие и медленно растут – действительно, они могут все еще отсутствовать после 40 дней. VNA наиболее вероятно способствуют защите против острой инфекции. Продемонстрированы другие механизмы, обусловленные антителами, напр. обусловленная антителами клеточная цитотоксичность (ADCC) и антителообусловленный лизис. Как и при других альфагерпесвирусных инфекциях, клеточнообусловленный иммунитет играет важную роль в защите, так как отсутствие сывороточных антител у вакцинированных кошек не означает, что у кошек будет развиваться заболевание; с другой стороны, сероконверсия не коррелирует с защитой против вирулентных штаммов FHV.

Хотя наличие антител и защита против появления клинических симптомов коррелируют, в настоящее время нет доступных тестов, которые показывают степень защиты у конкретной кошки. Поскольку FHV является патогеном респираторного тракта, важны ответы клеток слизистой и гуморальные ответы. Исследования с интраназальными вакцинами показали клиническую пользу уже через 2-6 дней после вакцинации.

Диагноз

Методы выявления герпесвирусной инфекции кошек

Предпочтительным методом для выявления FHVв образцах тканей является ПЦР, кроме того, в нескольких лабораториях пока используется изоляция вируса. Чувствительность и специфичность этих тестов, особенно ПЦР, зависит от лаборатории, вследствие недостаточной стандартизации.

Разновидности ПЦР, используемые в настоящее время для выявления ДНК FHVв мазках с коньюнктивы, роговицы или носоглотки, соскобов с роговищы, водянистой влаги глаза, корнеальных секвестров, крови или биопсийных образцов включают обычную ПЦР, гнездовую ПЦР и ПЦР в реальном времени. Большинство праймеров ПЦР основывается на хорошо законсервированном гене тимидинкиназы.

Молекулярные диагностические методы более чувствительны, чем изоляция вируса или непрямой иммунофлуоресцентный метод (EBM класс I).

Поскольку ПЦР выявляет мельчайшие количества нуклеиновых кислот вируса, положительные результаты должны интерпретироваться с осторожностью — они могут не доказывать какую либо связь с заболеванием. Чувствительность ПЦР зависит от формата теста; система должна включать контроль измерения ДНК кошек, для того, чтобы оценить количество потребляемого материала в мазке и контролировать ингибиторные субстанции. Вследствие его высокой чувствительности, ПЦР может также выявлять ДНК в соскобах с роговицы и/или миндалин, что может говорить о непродуктивной инфекции. Следовательно, его диагностическая ценность при клинической инфекции может быть плохой, в зависимости от чувствительности теста, анализируемых образцов ( биопсийный материал и соскобы с роговицы дают положительный результаты более часто, чем коньюнктивальные мазки) и тестируемой популяции (напр. кошки из приютов с большей вероятностью покажут положительный результат, чем домашние кошки).

Вдобавок, ПЦР тесты могут выявлять ДНК FHV в модифицированных живых противовирусных вакцинах; неизвестно, выявляются ли вакцинальные штаммы у недавно вакцинированных кошек и как долго после вакцинации.

Положительный результат ПЦР может показывать низкий уровень выделения вируса или латентное состояние вируса и это не означает, что вирус ответственен за наблюдаемые клинические признаки, хотя он показывает возможность рецидивирования симптомов в будушем. Однако, когда используется ПЦР в реальном времени (EBM класс II), измеренное количество вируса может снабжать дополнительной информацией о этиологической важности агента: когда высокое количество вируса находится в секретах носовой полости или слезной жидкости, это говорит об активной репликации и вовлечении вируса в развитие клинических симптомов. Если в соскобах с роговицы выделяется малое количество вируса, это может говорить о латентной инфекции.

При использовании молекулярной диагностики в клинической практике, применения флуоресцина и местных анестетиков необходимо избегать, поскольку они могут нарушать чувствительность ПЦР. Желательно контактировать с диагностическими лабораториями для выявления деталей сбора образцов и доставки их. Используя те же образцы, ПЦР позволяет одновременно выявлять другие патогены кошек, часто одновременно встречающиеся при респираторных и глазных заболеваниях, особенно Chlamydophilafelisи, менее надежно, калицивироз кошек.

Изоляция вируса (VI) является альтернативным методом диагностики FHVинфекции. Она менее чувствительна, чем ПЦР, но показывает, что имеется жизнеспособный вирус, а не просто ДНК вируса..

У кошек, подвергшихся первичной FHVинфекции, вирус может быть выявлен изоляцией из коньюнктивальных, назальных или фарингеальных мазков или соскобов или из посмертных образцов тканей легких. При хронических инфекциях, VIможет быть трудной.

Асимптоматические переносчики FHVмогут быть выявлены при помоши VI, но как позитивная, так и негативная предсказательная ценность VI, является низкой. Образцы должны быть собраны до применения флуоресцина или окраски бенгальским розовым, которые ингибируют репликацию вируса в клеточной культуре. Кроме того, клинические образцы должны быть быстро посланы в лабораторию и охлаждаться во время транспортировки. Из-за этих логистических причин и несмотря на хорошую чувствительность к острому заболеванию, VI не используется стандартно для диагностики инфекции FHV.

FHV- специфический антиген может быть выявлен иммунофлуоресцентным методом (IFA) в коньюнктивальных или роговичных мазках или из биопсийных образцов. Как и при VI, использования флуоресцина необходимо избегать до взятия образцов, так как он может дать ложноположительный результат и затруднить интерпретацию теста. IFA менее чувствительный тест, чем VI или ПЦР, особенно при хронических инфекциях. Не наблюдается корреляции между VI и IFA, но комбинация обоих методов может диагностировать наличие FHV лучше, чем каждый из тестов в одиночку. Вследствие его низкой чувствительности и негативного влияния флуоресцина, часто используемого в офтальмологической практике, IFA не является подходящим диагностическим тестом при хронических глазных заболеваниях.

Серология

Антитела к FHVмогут быть выявлены при помощи теста нейтрализации или ELISAв сыворотке крови, водянистой жидкости глаза и цереброспинальной жидкости. Вследствие естественной инфекции и вакцинации доминирование серотипа является высоким и демонстрация специфических антител, поэтому, не коррелирует с заболеванием и активной инфекцией (EBM класс I).

Кроме того, выявление антител не позволяет дифференцировать между инфицированными и вакцинированными животными, нейтрализующие антитела не выявляются до 20 -30 дней после первичной инфекции и титры могут быть низкими, как у животных с острой, так и хронической формой заболевания. Следовательно, серология имеет ограниченную ценность в диагностике герпесвирусной инфекции кошек.

Клинические симптомы

Табл 1. FHV заболевание, поражения и клинические симптомы

( Примечание: Требуется исключение одновременно протекающей инфекции, вызванной другими патогенами, для установления FHV этиологии хронического ринита)

Тип заболевания	Патология	Клинические проявления
Классическое острое заболевание (цитолитическое заболевание)	Риниты, коньюнктивиты, поверхностные и глубокие язвы, особенно дендритные язвы	Чихание, выделения из носа, гиперемия коньюнктивы и серозные выделения из глаз
Атипичное острое заболевание	Кожное заболевание Виремия, пневмония	Назальные и лицевые изьязвления и корки Выраженные системные симптомы, кашель, смерть (острая смерть у котят, «синдром увядания котят»
Хроническое заболевание (иммунообусловленное заболевание)	Стромальный кератит Хронический риносинусит	Отек, васкуляризация роговицы, слепота Хроническое чихание и выделения из носа
Возможно относящиеся к FHV заболевания	Корнеальный секвестр Эозинофильный кератит Неврологическое заболевание Увеит

Герпесвирусная инфекция кошек типично вызывает острое заболевание верхних дыхательных путей и глаз, которое особенно сильно выражено у молодых котят. Репликация вируса вызывает эрозию и изьязвление слизистых, приводя к ринитам, коньюнктивитам и, иногда, к язвам роговицы; дендритные язвы рассматриваются как патогномоничное проявление. FHV является наиболее важной причиной язвы роговицы. Типичные клинические симптомы начинаются с саливации, чихания и кашля, за этим следует повышение температуры, депрессия и анорексия, серозно - геморрагические выделения из глаз и/или носа и гиперемия коньюктивы. Вторичная бактериальная инфекция наблюдается часто, в этом случае секрет становится гнойным. Иногда наблюдается первичная пневмония и виремия, с выраженными генерализованными симптомами и фатальным исходом. Менее часто встречаются язвы в ротовой полости, дерматиты, язвы кожи и неврологические симптомы. Редким вторичным эффектом являются аборты, которые не являются прямым следствием репликации вируса -в противоположность герпесвирусной инфекции у других видов. После реактивации и рецидива кошки могут демонстрировать острое цитолитическое заболевание, как описано выше. Другие кошки могут демонстрировать хроническое глазное иммуннообусловленное заболевание в ответ на присутствие антигена FHV.

Экспериментальные инфекции, вызывающие стромальный кератит с отеком роговицы, инфильтрацией воспалительными клетками, васкуляризацией и, в конечном итоге, слепотой говорят об этом патогенетическом механизме. Корнеальное секвестрирование и эозинофильный кератит связаны с присутствием FHV в роговице и/или в крови. Однако, точная причинная ассоциация не может быть сделана, поскольку некоторые больные кошки являются FHV- негативными. Вирусная ДНК выявлена в водянистой влаге глаза у большей части кошек, страдающих от увеитов, в сравнении со здоровыми кошками, наводя на мысль, что FHV может играть роль в воспалении.Хронические риносинуситы, частая причина чихания и назальных выделений, также ассоциированы с инфекцией; однако, вирусная ДНК выявлена только у некоторых больных кошек и также у здоровых, в контроле. Репликации вируса FHV не наблюдается, что говорит о том, что вирус может только инициировать это состояние, которое затем может поддерживаться иммунообусловленными механизмами,типа воспалительного и ремоделирующего феномена, приводя к необратимой деструкции носовых раковин и костей и осложняющихся вторичной бактериальной инфекцией.

FHV инфекция часто встречается в комбинации с калицивирозом кошек и/или Chlamydophila felis, Bordetella bronchiseptica, Mycoplasma spp. Другие микрорганизмы, включая Staphylococcusspp. иEscherichiacoli могут вести к вторичной инфекции респираторного тракта, вызывая многоагентный респираторный синдром.

Лечение герпесвирусной инфекции кошек

Поддерживающее лечение

У кошек с выраженными клиническими симптомами требуется восстановление водного, электролитного и кислотно-щелочного баланса (т.е возмещение потерь калия и бикарбоната вследствие саливации и сниженного потребления пищи), предпочтительнее путем внутривенной инфузии. Потребление пищи чрезвычайно важно. Многие больные кошки не едят, поскольку они теряют обоняние вследствие застоя в носовой полости, или из-за язв в ротовой полости. Пища может быть измельчена блендером, чтобы уменьшить болезненность при приеме пищи, должна быть высокоусвояемой и теплой, чтобы усилить ее запах. Могут быть использованы стимуляторы аппетита (напр.ципрогептадин). Если кошка не ест в течение 3 дней, показано размещение назальной или эзофагальной трубки для кормления.

Чтобы предотвратить бактериальную инфекцию, должны задаваться антибиотики во всех острых случаях острого заболевания верхних дыхательных путей, предпочтительнее препараты широкого спектра действия с хорошим проникновением в респираторный тракт. Тяжелобольным кошкам необходима интенсивная медицинская помощь и поддерживающая терапия. Выделения из носовой полости необходимо очищать несколько раз в день, используя физиологический раствор натрия хлорида и местное применение мазей. Препараты с муколитическим эффектом (напр. бромгексин) могут быть полезны. Глазные капли и глазные мази могут назначаться несколько раз в день. Может быть использована небулизация солевого раствора, для того чтобы увлажнить дегидратированные воздушные пути. Витамины используются, но их ценность не доказана.

Табл 2. Симптоматическое лечение острого респираторного заболевания

Препараты	Комментарии	Рекомендации	EBM класс
Местное лечение
Промывание носовой полости изотоническим солевым раствором и небулизация	Убрать выделения из носа и предотвратить дегидратацию верхних дыхательных путей	Рекомендуется несколько раз в день	4
	Обеспечить достаточное потребление пищи	Необходимо, если кошки не едят из-за повышенной температуры и/или язв в ротовой полости, или из-за потери обоняния вследствие назального застоя: пища может быть измельчена блендером и подогрета для усиления запаха	4
Установка трубки для энтерального питания	Обеспечить достаточное потребление пищи	Необходимо, если кошки не едят в течение 3 дней	4
Системное лечение
Жидкостная терапия	Контроль дегидратации и восстановление электролитного и кислотно-щелочного баланса	Необходимо у кошек с сильно выраженными клиническими симптомами	4
Антибиотики	Контроль вторичной бактериальной инфекции	Антибиотики широкого спектра действия с хорошим проникновением в респираторный тракт рекомендуются для кошек с выраженным заболеванием	4
Нестероидные противовоспалительные препараты	Снизить выраженность лихорадки	Рекомендуется, если кошка имеет выраженную депрессию	4
Препараты с муколитическим эффектом (напр. бромгексин)	Облегчить выделение слизистого назального отделяемого	Может быть полезным	4

Табл 3.Симптоматическое лечение острого глазного заболевания ( коньюнктивит и кератит)

Препараты	Комментарии	Рекомендации	EBM класс
Антибиотики	Контроль вторичной бактериальной инфекции	Местное применение антибиотиков	4
Противоспалительные препараты	Снизить локальное воспаление	Обычно нет необходимости; избегайте кортикостероидов	4

Противовирусное лечение

Табл 4. Противовирусные препараты, рекомендованные для местного и системного лечения острого FHV глазного заболевания. Эти препараты перечислены в порядке снижения значимости.

Местное лечение
Препарат	Тип препарата	Способ приме нения	Эффек тивность *in vitro*	Эффек тив ность in vivo	Контро лируемые исследо вания invivo	Комментарии	EBM класс
Трифлуридин	Аналог нуклеозида	Местное Применяйте каждый час в течение первых суток, а затем каждые 4 часа	Отличная	n.d	no	Местное лечение выбора при глазных проявлениях FHV. Некоторые кошки противятся местному лечению. Токсичен,если задается системно.	3
Цидофовир	Аналог нуклеозида	Местно 0,5% раствор	да	да	да	Местное лечение глазной формы FHV	3
Идоксуридин	Аналог нуклеозида	Местно первоначально каждые 2-4 часа	отличная	n.d	no	Местное лечение глазной формы FHV. Применяется виде 0,1% раствора. Токсичен при системном применении	3
Ганцикловир	Аналог нуклеозида	Местное	Отличная	n.d	n.d	Местное лечение глазной формы FHV. Хорошая in vitroактивность.	3
Ацикловир	Аналог нуклеозида	Местное и пероральное	Плохая (могут быть необходимы высокие дозы для преодоления резистентности вируса).	некоторая	да	Самый слабый invitro эффект из всех противогерпетических препаратов. Умеренный invitroэффект. Синергизм в сочетании с человеческим альфа – интерфероном. Токсичен при систематическом применении.	3
Системное лечение
Фамцикловир	Аналог нуклеозида (пролекарство)	Перорально 90 мг/кг в течение 3 недель	Да (для пенцикловира, поскольку фамцикловир является пролекарством пенцикловира)	да	да	Протестирован традиционным и экспериментальным способом против первичной инфекции	3
Омега - интерферон кошек	Интерферон	Системно 1МЕ п/к 1 раз в день или через день Перорально 50 000 -100 000 ЕД 1 раз в день Местное лечение: разведите 10 МЕ в 19мл 0.9% NaCl и используйте как глазные капли : 2 капли в каждый глаз 5 раз в день в течение 10 дней	да	n.d	да	Безопасен и эффективен для кошек Комбинированное местное и пероральное предварительное лечение до экспериментальной FHVинфекции не было успешным. Использовался вместе с L-лизином при хронических инфекциях	4
Человеческий альфа - интерферон	Интерферон	П/к высокая доза Перорально низкая доза 5-35 ЕД ежедневно	да да	да да	да да	Менее биоактивный, чем кошачий интерферон 5-35 ЕД ежедневно снижает клиническую симптоматику, но не уменьшает выделение вируса. Использовался вместе с L-лизином при хронических инфекциях	3
L-лизин	Аминокислота	500 мг 2 раза в день, не добавляя в пищу	да	да	да	Нет опубликованных данных о побочных эффектах,сообщения об эффективности противоречивы; может снижать уровень выделения вируса из глаз у латентно инфицированных кошек, испытывающих реактивацию; назначается отдельным болюсом, не добавляя к пище	2

n.d. = не установлено

Перечисленные препараты могут быть недоступны или не лицензированы для кошек.

Другие препараты предложены для лечения FHV глазных инфекций, включая бромовинилдепуридин, HPMA, рибавирин, валацикловир, фоскарнет и лактоферрин. Однако, эффективность этих препаратов не доказана.

Противовирусные препараты при герпесвирусе кошек 1 типа

Общие рекомендации по типу вакцины и протоколу вакцинации

Эта инфекция встречается часто и может вызвать тяжелое, даже угрожающее жизни заболевание. Поэтому, мы рекомендуем вакцинацию всех кошек против FHV. Вакцины обеспечивают иммунитет как при помощи выработки антител, так и с

помощью клеточного иммунитета. Вакцинация обеспечивает защиту против возникновения клинических симптомов и снижает выделение вируса в пределах одной недели после ее проведения, но, как и при других респираторных инфекциях, не обеспечивает полную защиту; примерно 90% снижения выраженности клинической симптоматики достигается экспериментальным заражением после вакцинации. Еще меньшая защита ожидается в случаях отягчающих обстоятельств, в частности, вследствие большой дозы вируса или иммуносупрессии. Вариации полевых штаммов не играют роль в защите, обеспечиваемой вакцинацией. Вакцинация защищает от заболевания, но не от инфекции. Однако, она может снизить выделение полевого вируса. Большинство существующих в настоящее время вакцин скомбинирована с вакциной против калицивироза кошек, как в виде бивалентной вакцины (только в некоторых странах), так и с дополнительными антигенами. Доступны как модифицированная живая, так и инактивированная вакцины для парентерального введения. Субьединичные FHV вакцины и модифицированные интраназальные вакцины имеются, или пока имеются, везде, кроме Европы. Для стандартной вакцинации, не имеется причин предпочитать какую либо FHV вакцину другой, поскольку все они базируются на одном серотипе. Модифицированные живые вакцины содержан некоторый патогенный потенциал и редко могут вызывать заболевание, напр. когда случайно вакцина проливается на кожу и заглатывается потом при груминге. Ценность серологических тестов в прогнозировании защитного эффекта вакцин сомнительна. Методологические вопросы могут осложнить сравнение титров (особенно, когда они получены в разных лабораториях) и они не дают хорошего прогноза защитного эффекта вакцины. Кроме того, установлено, что кошки имеют защиту без какого либо доказательства сероконверсии. У вакцинированных кошек обычно развивается вторичный иммунный ответ на полевую инфекцию.

Первичный курс вакцинации

Материнские антитела обычно препятствуют ответу на вакцинацию до 8 недель возраста в среднем; первичный курс вакцинации, поэтому, обычно начинается примерно в 9 недель возраста, хотя некоторые вакцины лицензированы для более раннего применения. Котята должны получить вторую вакцинацию через 2-4 недели, вторая вакцинация должна проводиться в возрасте примерно 12 недель. Этот протокол обеспечивает оптимальную защиту. Нет доступной информации по более длинным интервалам. В отличие от вакцин для других инфекций, для которых приемлема однократная вакцинация для взрослых кошек неизвестного или неопределенного статуса вакцинации, в случае с FHV рекомендуются две вакцинации с интервалом 2-4 недели, независимо от типа вакцины

Поддерживающие вакцинации

Мы рекомендуем применение поддерживающих вакцинаций 1 раз в год, чтобы защитить кошек от полевых инфекций. В ситуациях низкого риска (напр.кошки, не имеющие доступ на улицу, без контакта с другими кошками) рекомендуются трехлетние интервалы. Решение должно быть принято на основании анализа: риск- польза, но ежегодные поддерживающие вакцинации особенно важны в ситуациях высокого риска, напр. питомники- пансионы или разведенческие питомники. Экспериментальные исследования и серологические обзоры в полевых условиях ясно показали, что иммунитет против FHVдлится больше года (EBM класс II). Однако, имеется значительная пропорция кошек, на которых это не распостраняется. Хотя большинство кошек в полевых условиях имеют антитела против FCV( калицивироз кошек) и FPV (панлейкопения кошек), или показывают иммунный ответ после поддерживающей вакцинации, только около 30% кошек имеют титры против FHV и около 20% кошек недостаточно реагируют на поддерживающие вакцинации. В экспериментальных исследованиях по изучению эффективности вакцин защитный эффект отчетливо снижался со временем. Если срок действия поддерживающей вакцинации закончился, адекватно однократное введение вакцины, при условии, что интервал с последней вакцинации меньше 3 лет; если он более 3 лет, должны быть выполнены 2 иньекции с интервалом 3 недели.

Поддерживающие вакцинации можно выполнять вакцинами против FHV от других производителей. Кошки, которые выздоровели от заболевания, вызванного FHV, не имеют надежную защиту от рецидива заболевания. В большинстве клинических случаев агент, вызвавший заболевание не идентифицируется и кошки могут заболевать инфекцией, вызванной другими респираторными патогенами. Для безопасности, рекомендуется вакцинация выздоровевших кошек.

Контроль заболевания в специфических ситуациях

Домашнее содержание нескольких кошек

Герпесвирусная инфекция кошек часто встречается при домашнем содержании нескольких кошек. В зависимости от ситуации, мы рекомендуем алгоритм действий для приютов или для разведенческих питомников.

Приюты

FHV инфекция может представлять проблему в приютах для кошек. Мероприятия для предотвращения и ограничения инфекции также важны, как и вакцинация. В приютах, где поступающие кошки смешиваются с постоянно проживающими там, часто наблюдаются высокие уровни инфекции. Для контроля этой ситуации, новоприбывшие кошки должны карантинироваться в течение первых 3 недель и содержаться индивидуально, кроме случаев, когда кошки из одного и того же дома. Должны быть выполнены необходимые мероприятия для избежания перекрестной инфекции. Новые кошки должны вакцинироваться как можно быстрее, когда они здоровы и нет противопоказаний к вакцинации. Если имеется особенно высокий риск, напр. FHV инфекция в прошлом или недавнем прошлом, должна использоваться модифицированная живая вакцина, поскольку, она снабжает более ранней защитой. При вспышке острого респираторного заболевания идентификация причинного агента- с дифференциацией между FHV и FCV- может быть полезна в принятии решения о соответствующих предохранительных мерах.

Разведенческие питомники

FHV инфекция может быть большой проблемой в разведенческих питомниках, где она наиболее часто наблюдается у молодых котят до отьема -типично от 4 до 8 недель возраста, когда материнский иммунитет ослабляется. Источником инфекции часто являются матери котят, если они являются переносчиками вируса, а также имеют латентную инфекцию, реактивирующуюся при беременности и лактации. Инфекция у таких молодых котят часто тяжелая, охватывающая весь помет. Смертность может быть значительной, а некоторые котята, выздоровевшие от острого заболевания, получают осложнения, главным образом, хронический ринит. Вакцинация матерей не является альтернативой, поскольку она не предотвращает возможность кошки стать переносчиком. Однако, если мать имеет хороший титр антител, котята получат пользу от высоких уровней материнских антител, передающихся через молозиво, что обеспечивает защиту в течение первых недель жизни. Поддерживающие вакцинации матерей могут быть, поэтому, показаны,что в идеале нужно делать до спаривания. Кроме того, может быть рассмотрена вакцинация в течение беременности (если спаривание не было распознано), но вакцины не лицензированы для использования у беременных кошек, и, в этой ситуации, предпочтительнее инактивированные вакцины. Матери должны рожать в изоляции и помет не должен ни смешиваться, ни контактироватьс другими кошками, до тех пор, пока они не будут полностью вакцинированы. Ранняя вакцинация должна рассмотриваться для пометов от матерей, которые ранее имели инфицированные пометы. Самый ранний возраст, для которого лицензированы вакцины против FHV, составляет 6 недель, но котята могут становиться чувствительными к инфекции раньше этого возраста, поскольку материнский иммунитет ослабевает. Может быть рассмотрена вакцинация около 4 недель возраста, с повтором каждые 2 недели до начала первичной вакцинации в обычном режиме. Ранний отьем с изоляцией примерно в возрасте 4 недель является альтернативным подходом к защите котят от материнской инфекции. Не имеется надежных тестов, которые идентифицируют матерей -переносчиков и прогнозируют возможность инфицирования ими своих котят.

Вакцинация у кошек с нарушенной иммунной функцией.

Вакцины не будут создавать иммунитет у животных с нарушенной иммунной функцией. Системные заболевания, генетически обусловленный или вызванный вирусом иммунодефицит, плохое питание, одновременное назначение иммуносупрессивных препаратов и выраженный, пролонгированный стресс являются осложняющими факторами. Такие животные должны быть защищены от контакта с инфекционными агентами в первую очередь, но вакцинация инактивированной вакциной должна быть рассмотрена.

FIV - положительные кошки

FIV (вирусный иммунодефицит кошек)-положительные кошки должны быть защищены против FHV содержанием их внутри помещения. Если это невозможно, должна быть рассмотрена вакцинация. Есть опасения, что вакцинация может способствовать прогрессированию FIV инфекции, но польза защиты потенциально иммунокомпромиссных кошек перевешивает этот маленький риск. Кроме того, другие инфекции могут способствовать прогрессированию FIV. У FIV-положительных кошек с клиническими проблемами в анамнезе, но стабильным состоянием, должна рассматриваться вакцинация, чтобы гарантировать поддержку защиты от FHV. У кошек, страдающих от FIV заболевания, вакцинация не рекомендуется, как и у других кошек с системным заболеванием.

FeLV - положительные кошки

Те же самые аргументы применимы с к FeLV(вирусная лейкемия кошек)-положительным кошкам. Вакцинация противопоказана, если имеются клинические симптомы, относящиеся к FeLV инфекции. Если кошка выглядит здоровой, вакцинация должна быть рассмотрена для поддержки защиты, если предохранение от контакта с вирусом FHV не может быть обеспечено.

Хроническое заболевание

Поддерживающая вакцинация должна быть продолжена у кошек со стабильными хроническими состояниями, такими как гипертиреоидизм или почечное заболевание. Такие кошки часто более старые и, следовательно, инфекция может быть особенно тяжелой.

Кошки, получающие кортикостероиды или другие имммуносупрессивные препараты.

В зависимости от дозы и продолжительности лечения, кортикостероиды могут вызывать супрессию иммунных ответов. Влияние кортикостероидов на эффективность вакцинации у кошек неизвестно, тем не менее, одновременного использования кортикостероидов во время вакцинации следует избегать.

EBM ранжирование в этой статье

Медицина, основанная на доказательствах (EBM), позволяет клиницисту найти, оценить и интегрировать наилучшие в настоящее время доказательства в личный клинический опыт, пожелания клиента и потребности пациента.

Эта статья использует ранжирование EBM, что позволяет оценить в баллах уровень доказательности утверждений в соответствующих разделах (иммунитет, диагноз, лечение заболевания, контроль и вакцинация). Утверждения оцениваются по 4 балльной шкале как:

• EBM класс I Это наилучшие доказательства, содержащие данные, полученные от должным образом спланированных, рандоминизированных, контролируемых клинических исследований у целевых видов (в данном случае — кошек);

• EBM класс II Данные получены от должным образом спланированных, рандоминизированных, контролируемых клинических исследований у целевых видов со спонтанным заболеванием в экспериментальных условиях;

EBM класс III Данные основываются на нерандоминизированных клинических исследованиях, множественных сериях случаев, других экспериментальных исследованиях и существенных результатах из неконтролируемых исследований;

• EBM класс IV Мнения экспертов, сообщения о случаях, исследования у других видов, патофизиологическое обоснование. Если класс не установлен, то уровень доказательств EBM относится к классу IV.

Статьи по теме:

Подписаться на рассылку